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C - ETUDE DE L'EFFET DE L'ACIDE RETINOIQUE SUR LES CELLULES EPITHELIALES
C-1-CINETIQUE DE PROLIFERATION CELLULAIRE
C-2-SECRETION DE GLYCOCONJUGUES MARQUES
Comme nous l'avons déjà dit, l'acide rétinoïque joue un rôle déterminant
dans le différenciation des cellules épithéliales en culture. En
absence d'acide rétinoïque, les cellules s'orientent vers d'une
différenciation squameuse (Jetten, 1992). Par contre, en présence
d'acide rétinoïque, les marqueurs de la différenciation squameuse
sont supprimés et, il est observé entre autres, une diminution de
la prolifération et augmentation de la sécrétion de glycoconjuguée
(Chopra, 1989). Afin d'étudier l'effet de l'acide rétinoïque sur
les cellules épithéliales de trachée humaine, nous avons donc mesuré
en présence ou en absence d'acide rétinoïque :
- la cinétique de prolifération cellulaire
- la sécrétion de mucus après marquage radioactif d'un précurseur
: la [3H]-glucosamine,
tandis que l'expression des kératines après extraction a été étudiée
et la morphologie des cellules a été examinée en microscopie électronique
à transmission.
Lors de ces études, l'acide rétinoïque (Sigma Retinoic acid (Vitamin
A Acid ; Tretinoin) all ttrans) est dissous dans l'alcool absolu.
Les concentrations des solutions mères utilisées sont les suivantes
: 10-4, 10-6 et 10-8 M. Lors des
traitements des couches cellulaires, 1 % de ces solutions est ajouté
au milieu. Nous obtenons ainsi des concentrations finales de 10-6,
10-8, 10-10 M. Ces concentrations sont celles
utilisées dans la littérrature (Chopra, 1989 ; Saunders, 1993).
Les témoins sont traités par 1 % d'alcool.
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C-1-CINETIQUE DE
PROLIFERATION CELLULAIRE
L'étude de la cinétique de prolifération cellulaire a été réalisée
au 1er passage en utilisant des boîtes multiples de 96
puits de 0,32 cm2, stériles, en plastique de qualité
culture tissulaire. Les puits sont ensemencés à une densité de 40000
cellules/cm2. Les cellules sont placées dans un incubateur
à C02 pouvant maintenir une atmosphère à 5± 0,1 % de
CO2 et une humidité relative de 98 % à 37°C. Le milieu
de culture est renouvelé tous les deux jours. Quatres jours après
l'ensemencement, le mileiu de culture est supplémenté avec 10-6
M d'acide rétinoïque, le témoin étant supplémenté avec 1 % d'alcool.
Le traitement est renouvelé en même temps que le milieu de culture.
Les comptages sont réalisés par décollement des cellules par trypsination
aux temps choisis suivants : J1, J4, J6, J8, J11, J13 après l'ensemencement.
Les cellules sont comptées grâce à une cellule de Malassez.
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C-2-SECRETION DE
GLYCOCONJUGUES MARQUES
L'effet de l'acide rétinoïque sur la sécrétion de mucus par les
cellules épithéliales a été examiné par l'incoporation de [3H]-glucosamine
dans les macromolécules sécrétées. Les cellules d'un premier passage
sont ensemencées à raison de 40000 cellules/cm2 dans
des puits de 2 cm2. Les cellules sont placées dans un
incubateur à CO2 pouvant maintenir une atmosphère à 5±
0,1 % de CO2 et un humidité relative de 98 % à 37°C. Le traitement
par l'acide rétinoïque est effectué à partir du 5e jour
de culture. Le milieu de culture est supplémenté avec 10-6, 10-8,
ou 10-10 M d'acide rétinoïque, le témoin étant supplémenté avec
1 % d'alcool. Après 6 jours de traitement (3 renouvellements du
milieu de culture), 3 puits par concentration sont traités avec
10 µCi/ml (370 kBq/ml) de [3H]-glucosamine pendant 24
heures. Le milieu de culture est ensuite récupéré, auquel est ajouté
0,5 ml de PBS qui a servi à laver la cupule. La couche cellulaire
après détachement est dénombrée. Le milieu de culture est ensuite
dialysé contre 100 volumes d'eau à 4°C pendant 2 jours, le bain
de dialyse étant changé 4 fois. Les échantillons sont récupérés
et placés dans des tubes à scintillation contenant du liquide à
scintillation (Ecoscint ATM (Prolabo) biodégradable). La radioctivité
incorporée est déterminée en scintillation bêta (temps de compatage
1 minute).
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